miércoles, 9 de julio de 2008

perfil hepatico

Universidad de Oriente
Núcleo Bolívar
Escuela de Ciencias de la Salud “Francisco Battistini Casalta”
Cátedra: Bioquímica Clínica.










Perfil Hepático








Profesor:
Germán Guzmán

Alumnas:
Enidel Abad
Fanny Rodriguez







Ciudad Bolívar, julio del 2008




INTRODUCCION




El perfil hepático es un conjunto de exámenes de sangre que indican si su hígado está funcionando bien. El hígado se encuentra en el abdomen y está ubicado cerca de su estómago. Es un órgano muy importante, porque descompone y almacena algunas sustancias como el azúcar, la grasa y las vitaminas. El hígado también remueve las drogas y otros químicos de su cuerpo.
Los exámenes incluidos en los perfiles hepáticos varían de acuerdo a los laboratorios. Una lista común de exámenes incluye la búsqueda de enzimas hepáticas que provienen de los tejidos hepáticos dañados. Una enzima, es algo que ayuda a acelerar una reacción química en su cuerpo. Otras pruebas pueden buscar las sustancias producidas o cambiadas por el hígado, como son las proteínas o la bilirrubina.
En el hepatocito la ALT se encuentra solo en el citoplasma y la AST se encuentra tanto en citoplasma como en las mitocondrias, los que les origina gran diferencia en especificidad e intensidad de reacción a los procesos patológicos. (1)

La ALT se identifica en todo proceso inflamatorio necrotico del hígado y es muy empleada prueba determinadota en personas que donan sangre, para descartar Hepatitis viral activa. Es una enzima citoplasmática del hepatocito, que se libera fácilmente cuando existe alteración celular, se manifiesta con ictericia y se puede elevar muy poco en el infarto al miocardio e intensamente si predomina la éxtasis hepática por insuficiencia cardiaca. (1)

La AST Es una enzima que se encuentra tanto en el citoplasma del hepatocito como en las mitocondrias por lo que es binocular. Esta presente en la epidermis de la piel, miocardio, músculo estriado, páncreas y riñón. Los Glóbulos rojos contienen unas 10 veces más AST que el suero. Agentes como el etanol que inducen la necrosis de las mitocondrias celulares, liberan la AST lo mismo que la hepatitis viral. Es muy útil para medir la actividad hepática y cronicidad de hepatitis viral, se eleva en infarto al miocardio, al igual que en la mononucleosis, obstrucción biliar, cirrosis, metástasis hepática, pancreatitis aguda, anemia hemolítica e infección renal.












Determinación de ALT o GPT.

Fundamento del método

Basado en el siguiente esquema reaccionante:

L- alanina + 2-oxoglutarato GPT piruvato + L- glutamato

Piruvato + NADH + H* LDH L- lactato + NAD*

Reactivos provistos

Buffer: solución buffer TRIS pH 7.5 (30ºC) conteniendo L – alanina
Sustrato: viales conteniendo 2-oxoglutarato, nicotamida adenina dinucleotido (NADH) y lactato deshidrogenasa (LDH).

Instrucciones para su uso:
El buffer esta listo para usar
El sustrato: agregar 2 ml de buffer a un frasco de sustrato. Tapar, agitar hasta disolución completa y fechar.
La muestra debe ser tomada de forma usual

Material requerido:

Espectrofotómetro, Fc 1740
Micropipetas y pipetas para medir los volúmenes indicados
Baño de agua a la temperatura indicada en el procedimiento a seguir
Cronometro

Procedimiento:

Microtécnica

En una cubeta mantenida a 37 ºC, colocar:

Sustrato reconstituido 1 ml
Muestra 100 ul

Mezclar inmediatamente y dispara inmediatamente el cronometro y leer al minuto luego 2, 3 y 4 min.

El aparato que se encuentra en el laboratorio de Bioquímica clínica es semiautomático y nos dio los resultados, sin tener que hacer nosotros los cálculos como sacar la media absorbancia ni delta A. nuestro resultado fue: 6.21 UI/L ( 37°c)
Los Valores de referencia son:
En hombres: de 0 – 49 UI/L
En mujeres: de 0 – 31 UI/L


Determinación de AST o GOT.

Fundamento del método

Basado en el siguiente esquema reaccionante:

L- aspartato + 2-oxoglutarato GOT oxalacetato + L- glutamato

Oxalacetato + NADH + H* MDH L- malato + NAD*

Reactivos provistos

Buffer: solución buffer TRIS pH 7.8 (30ºC) conteniendo L – aspartato
Sustrato: viales conteniendo 2-oxoglutarato, nicotamida adenina dinucleotido (NADH) y malato deshidrogenasa (MDH) y lactato deshidrogenasa (LDH).

Instrucciones para su uso:
El buffer esta listo para usar
El sustrato: agregar 2 ml de buffer a un frasco de sustrato. Tapar, agitar hasta disolución completa y fechar.
La muestra debe ser tomada de forma usual

Material requerido:

Espectrofotómetro, Fc 1740
Micropipetas y pipetas para medir los volúmenes indicados
Baño de agua a la temperatura indicada en el procedimiento a seguir
Cronometro

Procedimiento:

Microtécnica

En una cubeta mantenida a 37 ºC, colocar:

Sustrato reconstituido 1 ml
Muestra 100 ul

Mezclar inmediatamente y dispara inmediatamente el cronometro y leer al minuto luego 2, 3 y 4 min.

El aparato que se encuentra en el laboratorio de Bioquímica clínica es semiautomático y nos dio los resultados, sin tener que hacer nosotros los cálculos como sacar la media absorbancia ni delta A. nuestro resultado fue: 19.76UI/L ( 37°c)

Los Valores de referencia son:
En hombres: de 0 – 38 UI/L
En mujeres: de 0 – 31 UI/L








































BIBLIOGRAFIA

Ángel, G. Ángel, M. Interpretación Clínica del Laboratorio. Transaminasas. Bogota – Colombia. 2006

perfil lipidico

UNVERSIDAD DE ORIENTE
NUCLEO BOLIVAR
ESC. CS. DE LA SALUD
DEPARTAMENTO DE BIOANALISIS
ASIGNATURA: LAB. DE BIOQUIMICA CLINICA.



PROFESOR: BACHILLER:
GERMAN GUZMAN. Fanny Rodríguez.
CI. 16648573
CIUDAD BOLIVAR, JUNIO DE 2008.

INTRODUCCION

En la realización de un perfil lipidico de determina el colesterol total y sus fracciones , así como los triglicéridos en la rutina diaria del laboratorio clínicoEl colesterol es un esteroides que se encuentra distribuido en casi todas las membranas celulares del organismo animal especialmente en tejido nervioso.
La mayor parte del colesterol del organismo se origina por síntesis (≈1g/dia) y una pequeña cantidad (≈0.3g/dia) es suministrado por los alimentos de la dieta, principalmente carne, hígado, sesos yema de huevos.Se sintetiza principalmente en hígado, corteza suprarrenal, piel e intestino. En el organismo se encuentra bajo dos formas químicas: colesterol libre y colesterol esterificado e su grupo 3-OH con ácidos grasos de cadena larga.
En el plasma un 25% de colesterol total se encuentra en forma libre y un 75% en forma esterificada. El colesterol es transportado como lipoproteínas encontrándose la proporción mas alta de colesterol en las LBD ( lipoproteínas de baja densidad ) las cuales se forman a partir de LMBD ( lipoproteínas de muy baja densidad ) y una pequeña proporción en las LAD ) lipoproteínas de alta densidad) la cantidad de colesterol en los quilomicrones es mínima y representa el colesterol suministrado por la dieta.El colesterol tienes funciones muy importantes en el organismo ya que es uno de los componentes estructurales de las membranas celulares y además es precursor de hormonas esteroideas, sales biliares y vitamina d.Loa valores de colesterol normales varian en cierto grado con la edad y el sexo. en lactantes es frecuente encontrar cifras normales de 60mg/dl como termino medio, pero estos valores aumentan y en la pubertad se aproximan a los del adultos .con respecto al genero los niveles de colesterol son mas altos que en la mujer, los estrógenos tienden a disminuir el colesterol plasmático.
En el embarazo en la segunda mitad de gestación se observa un aumuento del colesterol plasmático en un 30% aproximadamente por encima del valor normal.finalmente el estre y el equilibrio hormonal afectan los niveles normales de colesterol.
Valores superiores e inferiores se observan





DETERMINACION DE LABORATORIO.
DETERMINACIÓN DE COLESTEROL TOTAL ENZIMÁTICO. (LABORATORIOS BIOGAMMA,CA)Fundamento:La determinación de Colesterol total esta basada en el procedimiento enzimático descrito por Allain, donde la colesterol esterasa (CE) hidrolizan los esteres de colesterol a colesterol libre y ácidos grasos. En presencia de oxigeno, el colesterol libre es oxidado por la colesterol oxidasa (CO) a cholest-4-en-3-one y peróxido de hidrogeno. Cuando el fenol esta oxadativamente acoplado con 4-aminoantipirina en la presencia de peroxidasa (HPO), y peróxido de hidrogeno se produce un cromóforo de quinoneimina. La intensidad del color producido es proporcional a la concentración de colesterol y se mide colorimétricamente a cerca de 500nm.
Ésteres de colesterol -----CE------- colesterol + ac. GrasosColesterol + O2 ------------CO------- Colest-4-en-3-one + H2O22H2O2 + 4-aminoantipirina + fenol ----------HPO----- quinonenica + 4H2O
La separación del HDL-colesterol, esta basada en la separación en la selectividad de los iones fosfotungstico y magnesio para precipitar todas las lipoproteínas con excepción del HDL-colesterol. Después de la centrifugación el HDL-colesterol contenido en el líquido sobrenadante, se determina con el mismo método que se determino el colesterol total.Muestra.
Las muestras mejor recomendadas son Suero recién extraído y no hemolizado. También se pueden usar plasma obtenido con EDTA.
Se recomienda un ayuno de 12-14horas antes de la extracción de la muestra, sobre todo si también se le va hacer la determinación de triglicéridos a la misma muestra. Sin no cumplen este requisito no deben usarse para determinar colesterol y HDL-Colesterol.

El colesterol en suero o plasma es estable:-Por 5 días a temperatura ambiente.-2 semanas refrigeradas-6 meses si se congela.NOTA: el HDL-colesterol no debe congelarse para es estable hasta 5 días refrigerado.Limitaciones del Método.
-Niveles de ácido ascórbico tan altos como 10 mg %, No Interfieren en la prueba-El presente método de Colesterol, á demostrado ser lineal hasta 500 mg/dl. Mas allá de este límite, las muestras deberán diluirse con solución salina (0,85%) y ensayadas nuevamente. El nuevo resultado deberá multiplicarse por el factor de dilución.
Procedimiento del método.
1.- Se marcaron 3 tubos: una para la muestra (M), otro para el estándar (St) y otro para el blanco reactivo (BR).2.- A cada tobo marcado se le agrego 1 ml de reactivo de colesterol y lleve a temperatura de reacción.3.- Se pipetea 10ul (0,010ml) de cada muestra o 50ul de sobrenadante de HDL-colesterol, al tubo de muestra. Se tapa y mezcla por inversión.4.- Se pipetea 10ul de estándar de colesterol y se agrega en el tubo rotulado para el estándar. Se tapa y mezcla por inversión.5.- Se incuban todos los tubos a 37º C por 5 min o 15 min a temperatura ambiente.6.- Después de la incubación se mezclan todos los tubos por inversión y lea dentro de los 30 min siguientes.7.-Leer a 500nm. Se lleva a 0 con el blanco reactivo.

Técnica.
· Tubo Mx: 10 ul de Muestra.
· Tubo St: 10 ul de Standard.
· Tubo blanco reactivo: 1ml de Mx, 1 ml de Standard, 1 ml de blanco reactivo.


DETERMINACIÓN DE HDL-C
Para determinar los valores de HDL-c, se deben utilizar 50ul del sobrenadante obtenido por este procedimiento del colesterol total, en la técnica descrita anteriormente.1.- Se marca el tubo de la muestra que se va a ensayar.2.- Pipetea 500ul al tubo.3.- Se agrega 50 ul de HDL- precipitante al tubo y poner en un vortex por 10 seg.Entre estos reactivos precipitantes son una mezcla del ácido fosfotungstico con hidróxido de sodio y cloruro magnesio con sulfactante. Que precipitan a las LDL y VLDL (lipoproteínas de muy baja densidad) mientras que las HDL permanecen en solución.4.-Se centrifuga a alta velocidad por 10 min para obtener un liquido sobrenadante bien claro.5.- Se utilizan 50ul del sobrenadante y 50ul del estándar de HDL-c para hacer el procedimiento del colesterol total.Técnica.Muestra: 0.050ml de Mx.Estándar: 0.050ml de ST.Reactivo: 1ml de Mx, 1ml de ST, 1ml de banco reactivo.Mezclar e Incubar 5 min a 37ºC (ó 10 min a temperatura ambiente).Leer la absorbancia a 505 nm.Limitación del método.Muchos anticonceptivos orales hacen disminuir los valores de HDL e incrementar los niveles de LDL. Los estrógenos han reportado efectos inversos.


DETERMINACIÓN DE TRIGLICÉRIDO (CASA COMERCIAL CHEMROY).
FUNDAMENTO:
Para establecer el diagnostico de hiperlipoproteinemia primaria o secundaria, es útil la cuantificación de triglicéridos en conjunto con otros lípidos. También es útil para dar seguimiento a la diabetes mellitus, nefrosis, obstrucción biliar y variar anormalidades metabólicas que resultan de disturbios endocrinos.
1.- El glicerol y los ácidos grasos se forman en una primera etapa por la acción de la lipasa sobre los triglicéridos.
2.- El glicerol se fosforila por la adenosin-5-trifosfato (ATP) para producir glicerol-3-fosfato (G-3-P) y adenosin 5-difosfato (ATP) para producir glicerol-3-fosfato (G-3-P) y adenosin 5-difosfato (ATP) en una reacción catalizada por la glicerol-kinasa (GK).
Glicerol + ATP-----GK--------- G-3-P + ADP
3.- La G-3-P es oxidada por la gliceril fosfato oxidasa (GPO) produciendo deshidroxiacetona fosfato (DAP) y peróxido de hidrógeno.
G-3-P + O2 --------GPO------ DAP + H2O2
4.- Los peróxidos reaccionan con 4-aminoantipirina y 4-clorofenol bajo la influencia catalítica de la peroxidasa (POD) para formar quinoneimina.
2H2O2 + 4-amionopirina ----POD----- quinoneimina + HCL + 4H2O
El factor aclarador lipemico (LCF) es una mezcla de aditivos especialmente diseñado por Biocheminal Trade integrados dentro del reactivo de triglicéridos para ayudar a minimizar las interferencias debidas a la lipemia.
Muestra-La heparina y EDTA son los anticoagulantes de elección.-No deben usarse fluoruros ni oxalatos. Separa el suero o el plasma-Los TG son estables por 10 días a 2-8’C-No deje las muestra a temperatura ambiente, ya que los fosfolipidos pueden hemolizarse liberando glicerol libre, falsamente aumentados los TG
Sustancias interferentes
-No debe usarse material que contenga glicerina-Muestras hemolizadasProcedimiento y técnica.
Muestra: 10 ul de Mx.Reactivo: 1ml de Mx, 1 ml de ST, 1 ml de reactivo blanco.Estándar: 10 ul de STIncuban todos los tubos por 5 min a 37º C, o a temperatura ambiente 10 min.Leer a 500nm antes de 15 minutos. Se lleva a 0 abs con el blanco reactivo.
CALCULOS DE LOS DIFERENTES ANALITOS PROCESADOS.
COLESTEROL:
[St]=200mg/dlLectura del st= 0,153Lectura de la muestra= 0,100Fc = [st] /lectuta del st.Fc: 200mg/dl / 0,153 abs= 1307,20 mg/dl[Colesterol]=Fc X lectura de la muestra[Colesterol] = 1307,20 mg/dl X 0,100= 130,7 mg/dl[Colesterol] = 131 mg/dl.
HDL-c:
[St] = 50 mg/dl.Lectura del st= 0,284.Lectura de la muestra= 0,133.Fc = 50mg/del / 0,284 = 176,06 mg/dl.[HDL-c] = 176,06 md/dl X 0,133 = 23,41 mg/dl[HDL-c] = 23 mg/dl.
TRIGLICÉRIDOS.
[St]= 200 mg/dl.Lectura del st= 0,280.Lectura de la muestra= 0,178[Triglicérido]= lectura de la muestra/ lectura del st X [st][Triglicéridos] = 0,178 / 0,280 X 200mg/dl = 127,14 mg/dl[Triglicéridos] = 127 mg/dl.
VLDL.[VLDL] = [triglicérido]/ 5.[VLDL] = 127 / 5 = 25,4 mg/dl[VLDL] = 25 mg/dl.
LDL[LDL] = [colesterol] – [HDL-c] – [VLDL][LDL] = 131 – 23 – 25 = 83 mg/dl
Colesterol total.
[Colesterol total]= [LDL] + [VLDL] + [HDL]
[Colesterol total] 83 + 25 + 23 = 131 mg/dl.
DATOS PARA EL REPORTE
PX: femenina
Edad: 29 años
VALORES DE REFERENCIA
· Colesterol total: 150 – 250 mg/dl
· VLDL: 16 – 36 mg/dl.
· HDL: 39 – 43 mg/dl.
· LDL: 83 – 140 mg/dl.
· Triglicéridos: 50 – 140 mg/dl.
Análisis: los valores obtenidos estan entre los valores de referencia


CONCLUSION
La detreminacion del perfil lipidico: Comprende determinación de: Lípido Método -Colesterol total Enzimático (Manual o Automático) -Triglicéridos Enzimático (Manual ó Automático) -HDL colesterol Directo (S.Homogéneo) . Con precipitación -LDL colesterol Calculado:Friedwald. Directo(revisión) -No HDL colesterol Calculado siTG>=200 mg/dl. ,igual LDL+VLDL Algunos incluyen: Col/HDL y LDL/HDL Fórmula de Friedwald: LDL= CT-(TG/5 +HDL). VLDL=TG/5 IMPORTANCIA: Determinación del Riesgo Coronario.CC: 1°causa de muerte en el mundo. Colesterol elevado (LDL) es causa de aterogénesis
En GENERAL A toda persona mayor de 20 años (ATP3 ),cada 5 años 2) ESPECÍFICO • Antecedentes fam. de DISLIPIDEMIA • Hipertensión • Diabetes Mellitus • Causas secundarias de hiperlipidemia • Evaluación del riesgo coronario se le debe realizar un análisis
La Interpretación del P. Lipídico y el riesgo coronario Analizar el perfil lipídico de acuerdo a los valores de referencia de Ø ATP III Determinar si existe dislipidemia ,qué tipo,si su causa( primaria o Ø Øsecundaria) Determinar el número de factores de riesgo coronario principales (exceptuando LDL y triglicéridos) Determinar el riesgo de evento coronario en años según Framingham. Framingham Determinar el nivel oØlos próximos 10 colesterol Determinar si el pacienteØcategoría de riesgo y el objetivo del LDL de vida o/i terapéutico Determinar laØrequiere tratamiento de cambio de estilo meta del colesterol no HDL si Tg>Ø= 200 mg/dl
Adicionalmente si es posible evaluar otrosØ factores de riesgo(III)
Analizar Perfil Lipídico: Valores de referencia <>=240 Alto <100>=190 Muy Alto
Valores de referencia <40>=60 Alto(Protector) (Restar 1FR) <150>=500 Muy elevado
Valores de referencia Colesterol no HDL <130>=200 mg/dl) 2 Hipertrigliceridemia aislada (TG >=200 mg/dl) 3 Hiperlipidemia mixta(Col y Tg >=200 mg/dl) B HDL baja (en riesgo)<40 mg/dl aislada o acompañando a un tipo de Hiperlipidemia Combinaciones posibles: A1, A2, A3, B, A1+B, A2+B. A3+B Pueden a su vez ser: Primarias o Secundarias (adquiridas)


bibliografia
BISHOP, Michael L. “Química clínica” 5 ed. 2007.
GONZALEZ, J. M. Bioquímica clínica. 1998.
KAPLAN, L. y Pesce, A. (1986). QUÍMICA CLÍNICA. Panamericana: Buenos Aires.

GLUCOSA

UNVERSIDAD DE ORIENTE
NUCLEO BOLIVAR
ESC. CS. DE LA SALUD
DEPARTAMENTO DE BIOANALISIS
ASIGNATURA: LAB. DE BIOQUIMICA CLINICA.




PROFESOR: BACHILLER:
GERMAN GUZMAN. Fanny Rodriguez
CI. 16648573



CIUDAD BOLIVAR, JUNIO DE 2008.


INTRODUCCION



La energía es necesaria para el funcionamiento normal del los órganos del cuerpo. La fuente de energía celular más importante es la glucosa. Muchos tejidos sólo pueden utilizar grasas o proteínas como fuente de energía, pero otros, como el cerebro y los eritrocitos, sólo pueden utilizar la glucosa. La glucosa se almacena en el cuerpo como glucógeno. El hígado es un importante órgano de reserva de glucógeno. El glucógeno se moviliza y se convierte en glucosa por la glucogenolisis cuando la concentración de glucosa en sangre es baja. La glucosa también puede producirse a partir de precursores no carbohidratos, como piruvato, aminoácidos y glicerol, así como por gluconeogénesis. Es la gluconeogénesis la que mantiene las concentraciones de glucosa en sangre, por ejemplo durante los periodos de hambre y ejercicio intenso.
El páncreas tiene tanto funciones endocrinas como exocrinas. El tejido endocrino se agrupa en los islotes de Langerhans y consiste en cuatro tipos distintos de células cada una con su función propia: Las células alfa producen glucagón; las células beta producen proinsulina. La proinsulina es la forma inactiva de la insulina que se convierte en insulina en la circulación;Las células delta producen somatostatina; las células F ó PP producen polipéptidos pancreáticos.
La secreción de insulina se incrementa por: concentraciones elevadas de glucosa en sangre, hormonas gastrointestinales, estimulación adrenérgica beta
La secreción de insulina se inhibe por: catecolaminas, somatostatina
La insulina y el glucagón funcionan de forma sinérgica para mantener normales las concentraciones de glucosa en sangre. Una concentración elevada de glucosa en sangre produce la secreción de la insulina: la glucosa se transporta a las células corporales. La absorción de la glucosa por el hígado, el riñón y las células del cerebro se realiza por difusión y no necesita insulina. Los efectos del glucagón son opuestos a los de la insulina









PRUEBA DE LA TOLERANCIA A LA GLUCOSA ORAL
Esta prueba evalúa la capacidad del paciente para tolerar una carga de glucosa estándar, obteniéndolas muestras de sangre y orina para determinar los niveles de azúcar antes de la sobrecarga y después de una hora, dos horas, tres horas y a veces cuatro o cinco horas. Los pacientes con una propuesta de insulina apropiada pueden tolerar la dosis de glucosa con bastante facilidad y sólo presentan un mínimo aumento transitorio de la glucosa en la hora siguiente a la ingestión. En los sujetos normales la glucosa no pasará a la orina.

Esta es una prueba programada; la prueba de dos horas se realiza para detectar diabetes, pero tiene excepción en las mujeres embarazadas, la prueba de las tres horas se practica en las embarazadas (para detectar diabetes gestacional) y la de cinco horas ayuda a valorar la posible hipoglucemia.Sin embargo existen indicaciones para realizar la PTGO (prueba de la tolerancia a la glucosa oral), esta se debe realizar especialmente en individuos con:
Obesidad.
Antecedentes familiares de diabetes.
Antecedentes de infecciones recurrentes.
Antecedentes de partos con producto macrósomicos.
Episodios inexplicables de hipoglucemia.
Glucosuria transitoria o hiperglucemias durante el embarazo, cirugía, traumatismo, tensión y otros.

OBJETIVOS DE LA PRÁCTICA
Determinar la actividad de la glucosa mediante la curva de la tolerancia oral a la glucosa.
Interpretar los resultados obtenidos.


CONDICIONES PARA REALIZAR LA PRUEBA

Dieta adecuada tres días antes de la prueba: aproximadamente 3000 calorias/dia que contenga un mínimo de 300 g. de carbohidratos.
Suspender cualquier tratamiento con fármacos tres días antes de la prueba.
El paciente debe estar en ayuno 10 a 12 horas antes de la prueba.
El paciente debe descansar 30 minutos antes de iniciar la prueba.
Esta prueba es ambulatoria y no debe realizarse si el px esta hospitalizado, con una enfermedad grave o que altere el metabolismo de la glucosa.



Extraer muestra de sangre a la primera, segunda y tercera hora después de la ingestión de la solución glucosada.
También es necesario e importante obtener muestras de orina en cada hora, así como en la obtención de las muestras de sangre.

FACTORES QUE MODIFICAN LA PTGO
El tabaco y lo fármacos elevan los valores de glicemia.
Las variaciones diurnas de la glicemia
Ejercicio intenso o reposo excesivo.
El ayuno no debe ser menor de 10 horas, ni mayor de 12 horas.
Evitar la ansiedad o el estrés.
Enfermedades hepáticas, de tiroides, etc.
Se prefiere usar plasma o suero.


MATERIALES

Mx de sangre venosa.
Solución glucosada.
Reactivo.


FUNDAMENTO DEL PRINCIPIO DE LA PTGO (Prueba de Tolerancia a la Glucosa Oral

La glucosa es oxidada enzimaticamente por la glucosa oxidasa produciendo ácido glucónico y agua oxigenada. Esta última oxida al cromógeno en presencia de peroxidasa produciendo un compuesto de color rosado cuya intensidad es proporcional a la concentración de la glucosa en la muestra analizada.

Materiales:
1. Patrón 100mg!dl de glucosa: 1 vial con 2,5 ml
2. Enzimas: 2 viales con 2,5 ml c/u
3. Sustrato: 2 viales 2,5 ml c/u
4. Solución Tampón : 2 botellas con 250 ml c/u

Técnica:
1. Mezclar 10 microlitros de suero con un mililitro de reactivo reconstituido
2. Incubar por 10 minutos a 37 grados centígrados
3. Leer la absorbancia a 510 nm en espectronic 21. El color de la reacción es estable por 1 hora.

Valores de referencia: Suero o plasma: 70 – 100 mg/dl



DATOS DEL PACIENTE

Nombre: Yelifer García
Edad: 20 años.
Sexo: femenino.

RESULTADOS:

Glicemia basal (0 hora): 100 mg/dl
Primera hora: 108 mg/dl
Segunda hora: 96 mg/dl
Concentración de estándar: 100 mg/dl


GRAFICA DE PTGO


La paciente presenta valores normales se glucosa y es capaz se sintetizar la sobre carga de glucosa sin problemas, es decir, tiene un excelente funcionamiento del páncreas endocrino; ya que su valor basal se encuentra dentro de los V.R, luego de la sobrecarga de glucosa lógicamente aumento la concentración de glucosa serica pero pasada 2 horas este valor disminuyo un 20 % del valor basal y a las 3 horas la concentración de glucosa regreso al valor de normalidad.







































CONCLUSION
El comité de expertos reconoce que hay un grupo de sujetos con niveles de glucosa en sangre (glucemia) que, aunque no cumplen con los criterios diagnósticos de la diabetes, son demasiado altos para ser considerados normales. Este grupo se define por:
Glucemia basal alterada:
Tener glucosa plasmática en ayunas superior a 110 mg/dl (6.1 mmol/l), pero inferior a 126 mg/dl (7.0 mmol/l).
Tolerancia anormal a la glucosa:
Tener una glucosa superior a 140 mg/dl (7.8 mmol/l) e inferior a 200 mg/dl (11.1mmol/l), a las dos horas de someterse a una sobrecarga oral de glucosa de 75 gramos
De acuerdo con la glucemia plasmática basal (en ayunas), se pueden establecer las siguientes categorías:
· Glucosa basal normal: <110 mg/dl (6.1 mmol/l)
· Glucosa basal alterada: > 110 mg/dl (6.1 mmol/l) y < 126 mg/dl (7.0 mmol/l)
· Diagnóstico provisional de diabetes: > 126 mg/dl (7.0 mmol/l). El diagnóstico debe ser confirmado de acuerdo con los criterios vigentes.
Las categorías correspondientes cuando se realiza una medición de glucosa plasmática, a las dos horas de someterse a una sobrecarga oral de 75 gramos de glucosa, son:
· Tolerancia normal a la glucosa: < 140 mg/dl (7.8 mmol/l).
· Tolerancia anormal a la glucosa: > 140 mg/dl (7.8 mmol/l) y < 200 mg/dl (11.1 mmol/l).
· Diagnóstico provisional de diabetes: > 200 mg/dl (11.1 mmol/l). El diagnóstico debe ser confirmado de acuerdo con los criterios vigent






BIBLIOGRAFIA

BISHOP, Michael L. “Química clínica” 5 ed. 2007.
GONZALEZ, J. M. Bioquímica clínica. 1998.
KAPLAN, L. y Pesce, A. (1986). QUÍMICA CLÍNICA. Panamericana: Buenos Aires.
www.saludalia.com/docs/Salud/web_saludalia/pruebas_diagnosticas/doc/doc_glucosa.htm.

sábado, 28 de junio de 2008

Bioquimica Clinica. Analisis del Semen

Universidad de oriente
Núcleo bolívar
Departamento de Bioanálisis
Bioquímica clínica








Análisis de semen





Profesor: Bachiller:
German Fanny rodriguez


Ciudad Bolívar junio 2008
Introducción

Los avances en el estudio, conocimiento y métodos en cuanto a la reproducción humana se refiere han alcanzado en estos tiempos un crecimiento más que notable, y seguirá creciendo sin duda alguna, consiguiendo así dar respuestas positivas a aquellos que la solicitan al presentar algún tipo de anomalía o disfunción. No obstante y a pesar de todos estos avances, aún sigue siendo el análisis del semen la prueba esencial en una consulta por supuesta infertilidad, acompañado siempre de otras pruebas analíticas que estribarán de los resultas salidas.
Con el análisis de semen logramos obtener una cumplida información de las propiedades del semen en su conjunto, la producción espermática, la función de las glándulas sexuales accesorias y demás aspectos. Asimismo, es imprescindible efectuar al menos dos análisis seminales a fin de lograr unas resultas aceptables, eso si, entre prueba y prueba habrá una diferencia de más de quince días y menos de tres meses. Fuera de este margen no son fiables los resultados. Igualmente el varón que se somete a este estudio deberá, aconsejado por el facultativo, una abstinencia sexual de tres a cinco días. De este modo, si en una de las pruebas los indicadores dan normal, como es lógico el indicador es normal, así si está alterado en ambos se ultima como anormal. Y es que si las resultas de los dos exámenes seminales resultasen diferentes se repiten y realizan un tercer examen a fin de concluir sobre la producción de espermatozoides.
Los marcadores de calidad en el espermiograma estándar son el conteo de espermatozoides por mililitro, es decir, de concentración, el conteo total de espermatozoides, así como el estudio de la movilidad, la viabilidad y la morfología espermática. Igualmente, vienen a valorarse particularidades físico-seminales, como la apariencia que presenta, el volumen seminal eyaculado, la viscosidad o consistencia, el pH seminal y el conteo celular, ultimándose con un preciso recuento leucocitario.
Sobre los términos empleados según la concentración por mililitro y los valores normales, está la normozoospermia, referida a una concentración espermática de más de veinte millones por mililitro, siempre refieriendonos a la OMS; la oligozoospermia, referida a una concentración inferior a los vienite millones por mililitro en la muestra analizada; la astenozoospermia, referida a una cantidad inferior al cincuenta por ciento con progregresión lineal o menor del veinticinco por ciento con progresión rápida; la teratozoospermia, referida a una cantidad inferior al cincuenta por ciento con nos aspectos morfológicos normales se dice de una teratozoospermia; la azoospermia, referido a la ausencia de espermatozoides en el eyaculado; la aspermia; referido a la ausencia de eyaculado externo; y leucocitospermia, referido a la considerable presencia de un millon de leucocitos por mililitro.
En cuanto a los los indicadores, hay que tener en cuenta que la referencia volumétrica de eyaculado de tres y oscilaciones entre el uno y medio y seis mililitros, mientras que el pH oscila entre 7,2 y 8,0; asimismo, recordar los veinte millones de espermatozoides por mililitro en la concentración espermática, un valor referencial en el contaje total de espermatozoides de cuarenta millones, la de la movilidad lineal progresiva, del cincuenta por ciento, la de la movilidad lineal rápida del veinticinco, la de la morfología del veinticinco, la de la morfología normal del cincuenta, la del criterio estricto registrada en el treinta por ciento, la de la viabilidad registrada en un cincuenta por ciento, y por último la de las aglutinaciones en el diez.
Dentro de las anomalías de la densidad encontramos la azoospermia que es la ausencia de espermatozoides en el semen y que se explica por el deterioro del epitelio germinal. Se dice que hay dos tipología azoospermática por así decirlo, la a. secretora, con patología radicada en la zona testicular e incapacidad producción de espermatozoides y la a. obstructiva cuyo problema radica una obstrucción total de los conductos seminales, impidiéndose así el recorrido del fluido.















Condiciones que debe tener un paciente para la realización de un espermograma:

1 tener entre 3 y 5 días de abstinencia sexual:
Ideal: 3 días
Mínimo: 2 días
Máximo: 6 días


2 tener entre 3y 5 días de abstinencia alcohólica
3 no tener fiebre, gripe, ni ningún proceso viral o bacteriano
4 tomar muestra por masturbación en un colector estéril para examen de orina. La forma de recolección mas adecuada es la masturbación; sin embargo el coitus interruptus o preservativos libres de sustancias toxicas son validos.
5 Entregar la muestra en el laboratorio en un periodo no mayor a hora después de haber sido tomada la muestra , protegidas a temperaturas extremas (<20> 40ºc).
6 6 higiene, es necesario que el paciente se higienice los genitales con agua y jabón, se seque bien con una toalla sin usar. Antes de proceder a la obtención de la muestra, lavarse y secarse correctamente las manos.
7 Si la muestra es solo para estereograma, el paciente debe orinar completamente.
8 Obtener muestra completa, sin descartar ninguna porción con la técnica adecuada, y evitando que dentro del recipiente entre agua.
9 Manejar la muestra con precaución, recordando que se puede transmitir en ella , HIV; HEPATITIS B , VITUS DEL HERPES.


El semen se considera normal cuando tiene:

™ Mas de 20 millones de espermatozoides en un centímetro cubico.
™ Mas de 50% de espermatozoides móviles y por lo menos 30% de traslativos rápidos.
™ Mas de 30% de espermatozoides con forma y tamaño normal.

El semen se considera anormal cuando tiene:

™ Ausencia de espermatozoide: azoospermia
™ Disminución del numero de espermatozoides: oligoszoospermia
™ Disminución de la movilidad: astenozoospermia.
™ Alteración de la morfología: teratozoospermia.
™ Alteración de los 3 parámetros: oligastenoteratozoospermia.

Valores de referencia de las variables del semen según la OMS:


Volumen:………………………………………………. 2ml mas
ph:………………………………………………………….. 7,2 -7,8
Concentración de espermatozoide:………. 20 x 106 espermatozoides /ml o mas
Total eyaculado:……………………………………… 40 x 106 espermatozoides /ml o mas
Motilidad:……………………………………………….50% o mas con progresión lineal (categoría a+b) o 25% ocon mas progresión lineal rapida (categoría a)
Morfología:…………………………………………….. 30% o mas con morfología normal.
Examen macroscópico:

Aspecto:
Licuefacción:
La hora ocurre la licuefacción (capacidad de fecundar) por acción espermática 30 -15`
Color:
Cantidad de espermatozoide
Volumen:
Ph:
Nunca acido la viabilidad
Examen Microscopico
Examen al fresco, 1 gota de semen entre lamina y laminilla.


Motilidad: 100% móviles

Viabilidad:

Morfología:
Cabeza, cuerpo, cola
Apical: acrosoma se pierde cuando fecunda.


















Análisis de Semen
Nombre y apellido: Ricardo Brizuela
Edad : 28 años

Universidad de Oriente
Núcleo Bolívar
Departamento de Bioquímica Clínica

Examén Macroscópico: Examen Microscopico:
Aspecto: homogéneo Examen al fresco 1 gota de semen entre lamina y laminilla.
Licuefacción.: 60 min. Motilidad: 100% moviles
Ph: 6 Viabilidad: Mas del 90% viables
Color: blanco grisáceo
Volumen: 2ml

___________________________ Enidel Abad

Bioqumica Clinica. Funcionamiento Renal

UNIVERSIDAD DE ORIENTE
NÚCLEO BOLÍVAR
ESCUELA CIENCIAS DE LA SALUD
LABORATORIO DE BIOQUÍMICA CLÍNICA





Informe de Funcionamiento Renal






Lcdo. Germán Guzmán

Realizado por:

Fanny rodriguez
C.I 16.648573



Ciudad Bolívar, Junio de 2008
INTRODUCCIÓN


El riñón es el principal regulador del medio interno del organismo, es decir del liquido extracelular; se sabe que este se halla íntimamente relacionado con el liquido intracelular por lo tanto se comprende que toda la actividad celular d los diversos líquidos depende, e ultima instancia, d la capacidad renal para mantener constante.

La orina es el producto final de un sistema fisiológico de regulación homeostatica por los riñones resultantes de tres procesos básicos filtración, reabsorción y secreción.

Por esta razón, el riñón no debe ser considerado como un simple órgano excretor, sino como el instrumento principal de la homeostasis orgánica, y la orina el producto de sus funciones reguladoras.













ANÁLISIS DE ORINA


Nombre y Apellido: Luis Gutierrez
Edad: 24
Sexo M

Universidad de Oriente
Núcleo Bolívar
Laboratorio de Bioquímica clínica




Examen físico: Examen químico:
Color: amarillo claro proteinas: - Glucosas -
Aspecto: ligeramente turbio C. cetonicos - Bilirrubina -
Densidad: 1030 urobilinogeno - Sangre -
pH: 5 Nitritos +

Examen Microscopico: Cilindros: …….
Cel Epiteliales: escasas levaduras: ……
Cristales: ………….. Hematíes: ……
Mucinas: ………….. Bacterias: escasas
Leucocitos: 0 – 1 X c










PROCEDIMIENTOS


Se midió el volumen total de orina.
Se tomaron 10 ml de orina para centrifugarla a 1800 rpm por 5 minutos.
Se separó el sobrenadante.
Se realizo una dilución 1: 10





blanco
Estándar
Muestra
Ac. Pícrico
1.5ml
1.5ml
1.5ml
Reac. Alcalino
1.5ml
1.5ml
1.5ml
Muestra


0.2ml
Estándar

0.2ml

Agua
0.2ml




Mezclar


Todo se incuba a 37ºc por 15 minutos y se lee a 510 de abs.

Bioquimica Clinica. Enzimas para valoracion del Infarto

Universidad de Oriente
Núcleo Bolívar
Escuela de Ciencias de la Salud
Bioquímica Clínica



Perfil Enzimatico para la Valoracion del infarto agudo del Miocardio



























Prof: german guzman

Bachiller:
Rodríguez Fanny
C.I. 16.648.573



Cuidad bolívar junio del 2008


Introducción


Es el termino utilizado para describir los cambios necróticos agudos del miocardio debidos a la privación de forma repentina y catastrófica del aporte sanguíneo coronario durante un período de tiempo suficiente, resultado casi siempre de una oclusión coronaria aguda (trombosis, hemorragia sucínteme, o rotura de placa de ateroma).Muchos pacientes con ataques cardiacos agudos mueren en el transcurso de las primeras dos horas después de la iniciación de los síntomas, siendo difícil en estos casos demostrar los cambios estructurales de la necrosis aguda del miocardio pues las técnicas anatomopatológicas disponibles, no son capaces de descubrir los cambios más tempranos del infarto; siendo en estos casos la muerte consecuencia de arritmia grave por cambios electro fisiológicos precoces que llevan a la muerte súbita.
La patología coronaria alcanza actualmente proporciones epidémicas; según cifras de la Organización Mundial de la Salud (OMS), esta patología es responsable de un tercio de las muertes en varones entre 45 y 54 años de edad y de la muerte de 4 de cada 10 varones en todos los grupos de edades.






























LDH

Fundamento:

Para la determinación de la actividad de LDH en suero en 1955. Este método se baso en el clásico ensayo de Kubowitz y Ott 1943, utilizando la reacción de lactato a piruvato.
La relación de lactato a piruvato se convirtió en la reacción de preferencia aunque sea lenta, porque el rango de linealidad es amplio y no requiere de pre incubación.
El presente método se basa en esta reacción y fue optimizado para mayor sensibilidad y linealidad.

LDH
L-lactato + NAC ----------------›pirubato + NADH + H

Lactato deshidrogenasa cataliza la oxidación de lactato a piruvato con reducción simultanea de NAC a NADH. La cantidad de NAD reducido puede medirse como un incremento en absorbencia a 340nm. Esta cantidad es directamente proporcional a la actividad de LDH en suero

Procedimiento

Longitud de onda =340nm
Temperatura =25ºC,30ºC,37ºC
Blanco = agua
Reactivo = 1ml(pre-incubado por 5 min)
Muestra =25Ul ( pre- incubado)

Mezclar por inversión

Incubar =1min.a la temperatura de la reacción
Lectura = leer la observancia cada minuto durante 2 min.

Determinar la ∆ Abs/min. El ∆ Abs/min.
Multiplicado por el factor 6592 da el resultado en UI/L.

Valores de referencia

30ºC
37ºC
Hombres
50-166UI/L
80-285UI/L
Mujeres
60-132UI/L
103-227UI/L

Calculo:
Factor = 6980
Absorbencia 1minuto = 0.376
Absorbencia 2 minuto =0.337

L1-L2= 0.376 – 0.337 =0.039 = 0.0195x6980=136.11
2

Los valores obtenidos se encuentran entre los esperados



Bibliografía

PASTERNAK RC, BRAUNWALD E, SOBEL BE. Acute myocardial infarction
www.infarto al miocardio-monografias_com.htm

Bioquimica Clinica

Universidad de oriente
Núcleo bolívar
Escuela de cs de la salud
Departamento de Bioanalis




Analisis de Fosforo












Prof: Bachiller:
Lic. Germán Guzmán Enidel Abad.
Ciudad Bolívar 17 de junio de 2008
Fundamentos
Los iones fosfato reaccionan con el molibdeno en medio acido, formando un complejo amarillo, que por acción de un tampón alcalino, es reducido a azul-molibdeno, que es un medio calóricamente.

Procedimiento

Para la dosificación en la orina , homogenizar bien la muestra, separar 10ml, y conformar ph entre 1 y 3 con HCL concentrado para disolver los cristales de fosfato, diluir la orina 1:10 ( 0,1 ml de orina + 0,9 ml de agua destilada o desionizada). Multiplicar el resultado obtenido por 10.

Tomar 3 tubos de ensayo y proceder:

blanco
prueba
Patrón
Agua destilada
2,5 ml
2,5 ml
2,5 ml
Muestra
---
0,1 ml
---
Patrón (nº4)
---
---
---
Catalizador
1 gota
1 gota
1 gota

Mezclar
Reactivo molibdato nº2
1 gota
1gota
1 gota

Agitar con fuerza ( en esta etapa ocurre la turbiedad). Colocar en baño de agua fría (20 – 25 ºc) durante 3 minutos. El nivel del agua en el baño debe ser superior al nivel de los reactivos en los tubos de ensayo

Valores de referencia
Estos valores se deben usar tan solo a modo de orientación se recomienda que cada lab establezca, en la población atendida, su propia banda de valores de referencia.
Suero: Niños: 3,0 a 7,0 mg/dl
Adultos : 2,5 a 4,8 mg/dl
Orina: 340 a 100 mg/24 horas
Fosfolipidos (en lecitina): 125 a 300 mg/dl

Conversión de unidades convencional (mg/dl) x 0,323 = unidades SE (m mol/l)

Resultado:
5,98 mg/dl

Los resultados obtenidos se encuentran sobre los valores referenciales, esto puede deberse a una serie de factores q mencionaremos a continuación:
n Los reactivos pueden haber estado contaminados o vencidos.
n Aumento del aporte:
• Enemas de fosfato
• Suplementos intravenosos de fósforo (nutrición parenteral)
• Envenenamiento agudo
• Leche suplementada con fósforo en los niños
n Aumento de la absorción:
• Intoxicación por la vitamina D
n Disminución de la excrección urinaria:
• Insuficiencia renal aguda o crónica
• Hipoparatiroidismo
• Pseudohipoparatiroidismo
• Déficit de magnesio
• Síndrome lactoalcalino
• Calcinosis tumoral
• Hipofosfatasia
• Tratamiento con bisfosfonatos
n Paso desde el espacio intracelular:
• Síndrome de la lisis tumoral
• Rabdomiólisis
• Hemólisis
• Acidosis metabólica (cetoacidosis, acidosis láctica)
• Acidosis respiratoria
• Alcalosis respiratoria crónica

martes, 29 de abril de 2008

Practica de Control de Calidad

Universidad de Oriente
Núcleo Bolívar
Escuela de Ciencias de la Salud
Bioquímica Clínica




Control De Calidad




















Prof: Guzman German

Bachiller:
Rodríguez Fanny
C.I. 16.648.573



Cuidad bolívar 28 de abril del 2008


Introducción


El término “control” se refiere a la actividad (o inactividad) diseñada para cambiar una condición actual, o para hacer que permanezca inalterable.
Su objetivo es mantener una calidad o característica del producto dentro de un nivel satisfactorio.
EN RESUMEN...
“La única y verdadera razón de existir de una empresa es satisfacer a sus clientes”, aunque, claro está, la empresa debe generar suficientes utilidades para que siga cumpliendo su fin último.
La calidad total es un medio que toda empresa puede utilizar para el cumplimiento de esa noble misión: satisfacer al cliente.
HERRAMIENTAS UTILIZADAS EN EL CONTROL DE LA CALIDAD.
Se han desarrollado muchas técnicas para implementar la calidad total en las empresas. Una de ellas, que permite la participación cabal de los empleados es la utilización de los llamados círculos de calidad o círculos de mejoramiento.
Existen otras técnicas que son muy utilizadas y que, aunque son del tipo matemático, no son difíciles de entender y aplicar. Estas herramientas matemáticas y lógicas son la base para que los círculos de calidad puedan identificar y resolver los problemas de calidad.
Por mencionar algunas:
El gráfico de pareto.
El diagrama de causa y efecto.
El histograma.
Gráficas de control.
El diagrama de dispersión.
Hojas de verificación o chequeo.
Antes de finalizar esta pequeña introducción se definen dos conceptos que hoy día están muy de moda:
Mejoramiento continuo. Es el proceso mediante el cual se realizan continuamente pequeñas mejoras en todas funciones de la empresa y en el que todo el personal participa. Este proceso, además, se enfoca en ideas de bajo o nulo costo, está orientado a la acción y es de rápida aplicación. Los japoneses tienen una palabra para este proceso: kaizen, y representa la forma de vida del pueblo japonés: tratar de ser mejores cada día, aunque sea un poco.
Aseguramiento de la calidad. Es el conjunto de acciones planeadas o sistemáticas necesarias para proveer la adecuada confianza de que un producto o servicio satisfará las necesidades dadas.
IMPORTANCIA DE LA CALIDAD EN LA PRODUCTIVIDAD.
Por productividad se entiende que es el aumento de la producción por hora de trabajo.
Cabe mencionar que en el campo laboral pueden existir dos tipos de productividad:
a) Aumentar la productividad sin mejorar la calidad.
La administración superior ordena a los empleados que aumenten la productividad, lo que origina: la responsabilidad de producir más recae sobre los empleados, creando tensiones, frustración y temor.
Ellos tratan de cumplir las órdenes, pero a la vez realizan un trabajo de menor calidad.
b) Aumentar la productividad mejorando la calidad.
La administración superior trata de mejorar continuamente la calidad, aumentando por ello la productividad.
Hace cambios, sin gastos adicionales.
Su habilidad en mejorar el proceso da por resultado una disminución en los defectos, produciendo un aumento en unidades buenas, en calidad y productividad




















Fundamento del método



CE
Esteres de colesterol ----->colesterol+ac.grasos

Colesterol+O2-------->colest-4-en-3-one-H2O2


2H2O2+4-aminoantipirina+fenol------> quinonenica+4h2o
HPO



La separación de HDL-colesterol esta basada en la selectividad de los iones fosfotugstico y magnesio para precipitar las proteínas con excepción de HDL colesterol. Después de la centrifugación ,HDL-colesterolcontenido en el liquido sobrenadante se determina con el mismo método que se determino el colesterol








Procedimiento
· Marque un tubo para muestra (M) otro para el estándar y otro para el blanco reactivo.
· A cada tubo marcado agregue 1,0 ml de reactivo de colesterol.
· Pipetee 10ul de cada muestra a sus respectivos tubos y tape y mezcle por inversión.
· Pipetee 10 ul (0,010 ml) de estándar de colesterol total o (50 ul estándar de HDL-colesterol) en su respectivo tubo. Tape y mezcle por inversión. El tubo de blanco reactivo, no lleva nada.
· Incube todo los tubos a 37ºC por cinco minutos o 15 minutos a temperatura ambiente.
· Después de la incubación mezcle todos los tubos por inversión y lea dentro de los 30 minutos siguientes.
· Coloque el espectrofotómetro a 500 nm, lleve a “0” con el blanco reactivo. Lea todos los tubos y anote las absorbancias de (M) y (ER).

Valores Normales:

Deseable: Menos de 200 mg/dl
Limite Alto: 200-239 mg/dl
Alto: 240 o por encima mg/dl




Conclusión


El análisis de las grafica de control de calidad interno los valores se ubican dentro de las reglas de westgard y solo un valor se excede de la x por debajo de 2DS lo cual es una alarma. Y la corrida no se rechaza.














































Bibliografía


http://html.rincondelvago.com/control-de-calidad_

http://es.wikipedia.org/wiki/Control_de_calidad

http://www.seh-lelha.org/calidad.htm